期刊名称:生物医学研究与评论杂志
文章类型:研究
收到日期:2018年9月17日
接受日期:2018年9月19日
发表日期:2021-03-21
引用:Friedenson B(2018)基因组模型解释神经发育障碍的主要特征。J Biomed Res Rev Vol: 1, Issu: 2(36-57)。
版权:©2018 Friedenson B.这是一篇根据创作共用署名许可条款发布的开放获取文章,允许在任何媒介上不受限制地使用、分发和复制,前提是注明原作者和来源。
摘要
本研究的目的是了解感染在与神经发育障碍相关的染色体异常起源中的作用。在患有神经发育障碍的患者中,来自病毒和细菌(包括已知的致畸物)的DNA被用于检测已知导致神经发育障碍的染色体异常。结果支持了一种理论,即亲代感染破坏了神经发育所需的复杂的多系统基因协调。神经元、淋巴引流、免疫、循环、血管生成、屏障、结构和染色质活性所必需的基因都被发现在神经发育障碍中被删除的多功能簇中紧密相连。这些缺失可解释伴随神经系统缺陷的免疫、循环和结构缺陷。在被删除的集群中,特定的和重复的人类DNA与感染相匹配,并通过了严格的人工制品测试。在一些患者中,发现了表观遗传驱动突变,可能在功能上相当于删除一个簇或改变拓扑染色质相互作用,因为它们改变了对大染色体段的访问。在三个家族中,缺失的DNA序列与智力缺陷有关,并且没有被包括在任何基因组变异数据库中。这些序列为数千bp,明确匹配了外来dna。在复发性神经发育障碍的染色体异常中也发现了类似的同源性。 Viral and bacterial DNAs that match repetitive or specific human DNA segments are thus proposed to interfere with highly active break repair during meiosis, and sometimes delete polyfunctional clusters, and disable epigenetic drivers. Mis-repaired gametes produce zygotes containing rare chromosome anomalies which cause neurologic disorders and accompanying non-neurologic signs. Neurodevelopmental disorders may be examples of assault on the human genome by foreign DNA with some infections more likely tolerated because they resemble human DNA segments. Further tests of this model await new technology. Graphical representation of the work is shown in figure 1.
关键字
基因组,表观遗传学,神经发育障碍,染色体异常,逆转录转座子,染色体重排,神经疾病,出生缺陷,发育,感染。
摘要
本研究的目的是了解感染在与神经发育障碍相关的染色体异常起源中的作用。在患有神经发育障碍的患者中,来自病毒和细菌(包括已知的致畸物)的DNA被用于检测已知导致神经发育障碍的染色体异常。结果支持了一种理论,即亲代感染破坏了神经发育所需的复杂的多系统基因协调。神经元、淋巴引流、免疫、循环、血管生成、屏障、结构和染色质活性所必需的基因都被发现在神经发育障碍中被删除的多功能簇中紧密相连。这些缺失可解释伴随神经系统缺陷的免疫、循环和结构缺陷。在被删除的集群中,特定的和重复的人类DNA与感染相匹配,并通过了严格的人工制品测试。在一些患者中,发现了表观遗传驱动突变,可能在功能上相当于删除一个簇或改变拓扑染色质相互作用,因为它们改变了对大染色体段的访问。在三个家族中,缺失的DNA序列与智力缺陷有关,并且没有被包括在任何基因组变异数据库中。这些序列为数千bp,明确匹配了外来dna。在复发性神经发育障碍的染色体异常中也发现了类似的同源性。 Viral and bacterial DNAs that match repetitive or specific human DNA segments are thus proposed to interfere with highly active break repair during meiosis, and sometimes delete polyfunctional clusters, and disable epigenetic drivers. Mis-repaired gametes produce zygotes containing rare chromosome anomalies which cause neurologic disorders and accompanying non-neurologic signs. Neurodevelopmental disorders may be examples of assault on the human genome by foreign DNA with some infections more likely tolerated because they resemble human DNA segments. Further tests of this model await new technology. Graphical representation of the work is shown in figure 1.
图1:摘要的图形表示。
关键字
基因组,表观遗传学,神经发育障碍,染色体异常,逆转录转座子,染色体重排,神经疾病,出生缺陷,发育,感染。
简介
预防神经发育障碍的一种方法是更好地理解神经发育是如何协调的,然后确定破坏神经发育的环境和基因组因素。神经系统的发育需要多种功能的紧密调节和协调,以保护和滋养神经元。随着神经系统的发育,免疫系统、循环系统、颅骨和骨骼系统必须同步和协调。神经发育障碍伴随着这种协调的破坏。
平衡细胞遗传学异常的基因组序列水平分辨率的重大进展极大地提高了记录神经系统功能关键基因的调节和剂量变化的能力。根据DNA序列分析,一些染色体重排已被确定为导致个体先天性疾病的原因,因为它们破坏了正常发育所必需的基因[1-3]。人们对这些巨大的异常情况知之甚少,也没有有效的治疗方法。症状包括自闭症、小头畸形、大头畸形、行为问题、智力障碍、脾气暴躁、癫痫发作、呼吸问题、痉挛、心脏问题、听力损失和幻觉。由于异常与结果没有很好的相关性,遗传咨询是困难和不确定的。
已知一些母亲因素会干扰神经发育,包括感染,以及其他随后改变表观基因组的生活方式因素,但导致大多数神经发育障碍的遗传事件尚不清楚。在先天性神经疾病中,遗传通常是常染色体显性的,每个细胞都发生相同的染色体异常。目前的工作解释了来自感染的DNA如何导致染色体缺失、重排、表观遗传控制器受损和染色质拓扑异常。当感染利用免疫缺陷在中枢神经系统内复制时,可能会出现一些疾病,例如那些可追溯到microRNA生产缺陷[5]的缺陷。播散性感染可能会干扰减数分裂期间所需的高活性DNA断裂修复过程,以产生带有错误修复DNA的配子。在受精卵中,这会导致染色体异常。通过减数分裂产生配子是重组最活跃的时期。双链断裂启动减数分裂重组,数百条双链断裂发生[6]。雄性和雌性在减数分裂过程中重组的时间和持续时间有显著差异。精子细胞在青春期后持续发生减数分裂重组。 Errors in spermatogenesis underlie a prevalent and recurrent gene rearrangement that causes Emanuel syndrome. The phenotype of Emanuel syndrome includes intellectual disability, and dysmorphism [2]. In contrast, recombination in ova occurs in fetal life and then meiosis is arrested until puberty. [7].
在独特的、家族性和复发性先天性疾病中,已知致病重排的确切DNA序列[1-3]使得在同源人类序列中检测涉及微生物DNA的机制成为可能。对于逆转录病毒,插入热点可以显著改变基因组的3D结构,并破坏基本的染色质相互作用,这些相互作用在二维上看起来是远距离的[8]。即使是罕见和独特的发育障碍,也可以在影响免疫系统、循环系统、脑循环障碍形成和骨骼发育的染色质结构改变的背景下筛查与感染的同源性。这种筛查有助于咨询、诊断、预防和早期干预。
结果显示,一些先天性神经发育障碍中的DNA与多种感染中的DNA密切匹配,这些感染在人类DNA的长线性延伸上延伸,通常涉及重复的人类DNA序列。神经发育障碍被认为始于父母感染导致插入或干扰减数分裂在重复和独特的人类DNA序列。受影响的序列显示存在的线性簇的基因紧密间隔在二维。来自感染的干扰可以删除或破坏协调神经发育的人类基因簇和表观遗传调控因子。这种基因组干扰可解释伴随神经系统缺陷的免疫、循环和结构缺陷。因此,先天性神经发育障碍被认为是微生物对人类DNA的攻击造成的,是根据与宿主DNA的相似性选择感染微生物的一个例子。然而,线性2D模型有时不足以解释某些结果,重要的是要记住,二维的影响也可能改变3D拓扑结构。
然而,测试和验证来自可行模型的预测可能会刺激开发方法,以确定目前无法获得的难治性罕见疾病中感染的贡献。基于任何拟议模型的测试预测的收敛论点可能会减少当前可用技术的局限性的影响。
材料与方法
数据源
获得性先天性疾病的DNA序列来自已发表的染色体断点和重排位点的全基因组序列[1-3]。通过与多个微生物序列数据库的比较,确定了在复发性断裂位点附近是否存在具有显著同源性的人类基因组区域。在许多情况下,有强有力的证据表明,特定的人类染色体重排是先天性疾病的病理,这一数据是一个焦点。
微生物序列检测
对62例不同获得性先天性疾病患者的数百种不同的私人重排与已知感染人类的微生物的非人类序列进行了同源性[9]的测试,这些微生物包括:病毒(分类编号:10239),逆转录病毒包括HIV- 1(分类编号:11676),人类内源性逆转录病毒(分类编号:45617,87786,11745,135201,166122,228277和35268),细菌(分类编号:2),分枝杆菌(分类编号:85007)放线菌(分类编号:201174),衣原体(分类编号:51291)。
各种分析将Alu重复序列分为8个具有一致序列的亚家族(GenBank;登录号为U14567 - U14574)。为了纠正微生物序列中Alu重复伪象造成的错误,用相同的方法将微生物序列与所有8个一致的Alu序列和442个单独的AluY序列进行了独立比较。
通常会同时进行两项比较,一项排除人类,另一项包括人类。然后根据是否涉及致畸物、病毒或细菌对同源性进行分类。因为同源性代表了物种间的相似性,所以使用了“不连续的Megablast”,并在每次运行中测量了10个最强的同源性。已知的致畸物包括HIV-1、淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌。当微生物和人类DNA序列的相似性超过偶然性(E值)时,就会出现显著的同源性(由同源性评分表示)。为了尽量减少假阳性的机会,E值的截止
染色体本地化
当同源性确定后,将病毒FASTA序列输入BLAT或BLAST中,确定其在目标染色体中的位置,确定其人类基因组位置。插入序列也与小家鼠GRCM38进行了比较。p4 [GCF_000001635.24]染色体加上未放置和未定位的支架(注释版本106中的参考组件)。在特定注释中运行RefSeq基因组顶级序列(染色体,未放置和未定位的支架)的参考装配集。基于来自基因组序列的107,186个参考序列(RefSeq) rna进行了比较,这些rna具有不同水平的转录物或蛋白质同源性支持。BLAST程序还对这些非模板序列中矢量序列的污染进行了测试。缺失片段中的基因基于UCSC基因组浏览器中识别的当前基因。在UCSC基因组浏览器中也发现了9个模型细胞系中相关组蛋白的表观基因组修饰。在某些情况下,插入序列之间的同源性使用Needleman和Wunsch算法进行测试。
结果
相互依赖的功能聚集在同一染色体段上
神经系统的解剖关系与免疫、循环和防护罩发育所必需的结构有密切的关系和同步。在神经系统疾病中缺失的染色体片段中,神经系统、免疫系统、循环、脑循环障碍甚至骨骼结构所必需的基因都位于染色体的同一线性段上彼此靠近(图2)。DGAP161患者中4q34位点的缺失和DGAP125患者中19q12- 13.11位点的缺失分别显示在图2(a)和(b)中,分别作为其他大染色体缺失的代表例子。每个缺失属于每个测试类别的基因在图中用颜色编码。这些聚集排列是至关重要的,因为它们的缺失与严重的神经发育障碍[1]相关。在许多情况下,同一基因的交替剪接形式可能被用于编码多种功能,这些功能必须在不同的细胞之间同步和协调。在不同的细胞类型中通常发现多种功能。激素信号是一种主要的控制机制。
图2:神经系统与其他基本功能之间的密切关系在进化过程中发展起来。多个相互依赖系统的基因以簇的形式出现在同一染色体上。神经系统基因与免疫系统、淋巴循环连接、形成紧密连接的能力、结构外壳和染色质控制所必需的基因非常接近。编码这些和其他相互依赖功能的染色体片段的基因簇在私人神经发育障碍中被删除。这些损失增加了感染的易感性,这些感染与人类DNA的长链同源。基因是按照它们在染色体片段上出现的顺序排列的,基因符号的右边是它们的功能。蓝色基因与神经系统有关,粉色基因与免疫系统有关。黄色基因具有与血管生成、淋巴管生成、循环或神经系统屏障发展相关的功能。与保护和保护神经系统所需的基本骨骼结构或结缔组织发育相关的基因呈浅灰色。紫色的基因与所有细胞所需的一般功能有关。 The same gene may have several of these functions depending on its cellular location.
许多缺失的基因簇包括与感染密切相关的长链DNA
为了研究导致神经发育障碍的染色体片段缺失,在这些缺失的集群内部和侧面的序列中检测了与感染的同源性。在整个过程中发现了与感染的强烈同源性。为了证明这些关系的程度,删除的4q34染色体段(患者DGAP161[1])在200 kb块中测试了与前10个同源微生物的同源性。图3显示,与微生物的同源性分布在整个染色体4q34中。每次200 kb的分离只显示10个同源微生物,但有多达数百个,在整个4q34缺失中总共有数千个潜在的同源微生物。
图3:患者DGAP161中分散在4q34缺失染色体段的微生物序列的总同源性示例。每20万bp的片段都测试了前10个同源性,但还有数千个。这些同源性在这57个片段中按最大同源性分数排序。Y轴表示总同源性分数,x轴列出单个微生物。平均E值为5.3e-90(范围0.0至1e-87)。F. tularensis的值为33,368和79,059,截断为25000,以显示其他微生物匹配的更多细节。
对缺失染色体段内基因功能的深入分析预测了感染的易感性,并与发育障碍的症状相关。例如,DGAP125患者染色体19q12-q13.11缺失(图2)。缺失导致原病毒沉默、反转录转座子抑制、对病毒反应、指定免疫细胞谱系和调节细胞凋亡方面的缺陷。DGAP125缺失的19q12-q13.11条带与肉毒梭菌Mfbjuicb6有76个匹配。其中许多匹配延伸超过2800 bp,同源性为72-73%,E值为0.0。5’区76个匹配中43个与clostridium同源,约2800 bp,同源性73% (E=0.0)。接下来的100万bp又有33个与梭状芽胞杆菌的匹配。与Waddlia chondrophila和N. gonorrhoeae也有很强的匹配。DGAP125患者还存在其他较短的染色体异常。隐形和HIV-1致畸物以及多种其他感染与这些较短的异常相似(图4)。
图4:48例神经发育障碍患者中微生物与人类染色体异常同源性的总分。所有与每个患者染色体异常相匹配的组或个体微生物的同源性得分相加,形成图中的每个柱状图。微生物同源性评分根据个体微生物的类型进行颜色编码。1986年E值的平均值为7.3e-13[范围8e-11至2E-168]。发现的一些微生物通常不具有致病性,但如果免疫系统受损,则可能成为条件致病菌。内源性逆转录病毒序列可能干扰单细胞内的重组或修复。在少数情况下,同源性非常大,以至于它们会掩盖所有其他数据,因此这些数据被限制在12,000分。这是对DGAP154 (24,873 HIV/HTLV)进行的检测,如图所示。
19q12-q13.11的大量缺失使患者DGAP125特别容易感染,结果可能是毁灭性的。对感染防御的破坏与控制呼吸、突触组织和可塑性、神经嵴形成和神经冲动传递的协调基因有关。同时存在脑循环发育和结缔组织和骨骼生成的缺陷。其他具有聚集基因的染色体缺失在神经元辅助功能方面也存在缺陷,如DGAP125。
在突变的表观遗传驱动基因周围区域的微生物DNA同源性
在一些神经发育障碍患者中,强有力的证据表明该疾病是由截断的驱动基因[1]引起的。基因变化被确定为先天性神经系统疾病[1]的潜在表型驱动因素,根据现有的证据进行了测试,这些证据表明它们能够作为表观遗传调节因子和染色体缺失中发现的功能效应因子。由表1可知,致病驱动基因大多为表观遗传调控基因。例如,FOXA1、PH21A、CHD7和TCF4的基因产物介导或调节染色质重塑;ZBTB20和GATA3有助于调节染色质结构;CDKL5灭活组蛋白去乙酰化酶,WAC调节组蛋白泛素化;SOX5编码组蛋白去甲基酶;EHMT1编码组蛋白甲基转移酶;MEF12C与精神分裂症组蛋白高甲基化相关;KDM6A编码一个表观遗传开关,指定干细胞的命运; EFTUD2 gene product associates with chromatin binding proteins as part of the spliceosome; SNRPN is required for epigenetic imprinting; TET1 is a methylation eraser. Short DNA sequences (less than 20,000 bp) deleted from families [3] are also likely to damage epigenetic regulators. Mutations also occurred in genes within topology associated chromatin regions and in insulators (e.g. CTCF, cohesin complexes).
表1:神经系统基因的关系表观遗传功能和基因在免疫系统,循环系统和神经发育障碍的结构。
病人 | 提出的异常的主要表型驱动因素/其他可能的贡献者d=缺失,T=截断[1]或被结构变异[3]破坏的基因粗体条目与表观遗传调控或染色质修饰有关 | 致病性神经突变[24]与神经系统功能的关系 | 与免疫和感染的关系 | 与血液循环和血脑屏障的关系 | 与骨骼的关系,结构要求 |
DGAP002 | 14q12-q21.1 (d), NFKBIA (d), NKX2-1 (d) BAZ1A (d) FOXA1 (d)等许多缺失的基因FOXA1介导染色质重塑 | NOVA1在脊髓[25]中神经元迁移和轴突引导过程中调节Dcc选择性剪接。AKAP6与认知有关。FoxA1多巴胺合成 | foxg1染色体14q12缺失。Fox G1调控胸腺上皮细胞[26],NFKB1A调控免疫和炎症反应。对炎症和传染性疾病的管制放松。NKX2是脾脏发育所必需的。BAZ1A: DNA损伤恢复。FoxA1是调节性t细胞群的特征。在寄生虫感染中下调。 | FoxA1可以引导谱系特异性分化为血细胞、神经元或肌细胞。 | FoxA1通过骨形态发生蛋白调节骨形成,这是椎间盘所必需的 |
DGAP011 | FGFR1 (T), FGF在发育过程中调节染色质组织 | 轴突引导[27] | FGFR1可能有助于NK细胞和t细胞之间的相互作用。 | 帮助保护和维持血脑屏障[29]与血管重塑有关。 | 骨骼和颅面发育,软骨形成和成骨 |
DGAP012 | PHF21A (T),染色质调节器中断在断点 | 编码BHC80, BRAF35组蛋白去乙酰化酶复合物的一个组分。抑制神经元特异性基因,在神经元和非神经元组织的发育中具有根本重要性[30]。 | 组蛋白去乙酰化酶与抑制因子1相互作用,抑制因子1通过一氧化氮自由基[31]控制神经元细胞向神经胶质细胞的转变。 | 促进血管生成,内皮细胞存活。组蛋白去乙酰化酶对缺血再灌注损伤有保护作用。 | 没有找到 |
DGAP093 | CDKL5 (T)在断点中断,磷酸化HDAC4组蛋白去乙酰化酶,导致细胞质滞留[32]。 | CDKL5 Rett综合征,一种产后神经系统疾病,在一段时间接近正常发育后出现。甲基化抑制剂介导MECP2磷酸化。癫痫发作可能反映了CDKL5在树突树突化中的作用。 | 小胶质细胞[33]的炎症反应解除调控。 | PI3K-Akt通路富集(可能参与紧密连接开放)影响红细胞形状 | 没有找到 |
DGAP096 | WAC (T),在断点,被易位破坏,调节组蛋白泛素化 | 需要认知,预防智力障碍,行为障碍。 | 自噬和自噬体形成所必需的[34]。DNA损伤检查点激活。 | 正常血液学功能所需。 | 没有找到 |
DGAP099 | ZBTB20 (T)结合到控制染色质结构的基因,包括MEF2c和SAT2b | 脑胼胝体发育。与控制神经元亚型的基因结合 | 浆细胞分化,依赖TLR2和TLR4[35]的先天免疫功能受损。 | 促进参与血脑屏障[36]的星形胶质细胞的生成。在某些设置中控制VEGFA的表达。 | 调节软骨细胞分化, |
DGAP100 | KDM6A (T).组蛋白去甲基化酶和表观遗传开关指定干细胞命运[37] | BDNF调节小脑皮层功能突触的成熟。调节干细胞谱系命运的表观遗传开关 | 去甲基化酶KDM6a表观遗传促进巨噬细胞中IL-6和IFN-β的产生 | 造血细胞前体[38]的干细胞迁移 | 促进成骨分化 |
DGAP112 | 12p12.1-p11.22 (d), SOX5 (d), KRAS (d);MED21(d) SOX5是一个组蛋白去甲基酶在断点被重排破坏。在断点处的MED21可能需要置换组蛋白来实现热休克反应[39]。 | SOX5:指定背侧中间神经元的细胞命运。 | SOX5: Th17细胞分化;与细胞质吞噬蛋白ELMO1 [40] LRMP,淋巴限制性膜蛋白在生发b细胞中含量高;KRAS参与识别DNA损伤[41]的先天免疫途径 | SOX5与紧密连接蛋白如ZO-5、occlading和claudin[42]相互作用。可能控制神经干细胞向星形胶质细胞的分化。KRAS可以调节循环和血管形成。 | SOX5软骨形成的标记基因 |
DGAP124 | NRXN1 (T)重排中断断点处的抑制性组蛋白标记,控制NRXN剪接异构体的选择。组蛋白甲基转移酶[43]抑制 | 表面识别分子对组织和形成突触至关重要;成千上万的异构体由于选择性剪接。一些形式与突触间隙中的C1qls相互作用,提示与修剪连接[44]有关。 | C1qls属于参与先天免疫的炎症介质TNF超家族。来自NRXN的肽阻断葡萄球菌生物膜[45]的形成 | NRXN1调节造血信号[46]。 | 没有找到 |
DGAP125 | 19q12-q13.11 (d) 19:28,105,514-34,809,581 | 见图2 | 看到Figure2 | 看到Figure2 | 看到Figure2 |
DGAP127 | PAK3 (T)对PAK1进行补偿,PAK1与组蛋白H3相互作用 | 树突状细胞生长。突触可塑性。 | PAK3表达显著降低发生在朊病毒疾病中,如人类的克雅氏病和动物的痒病[47]MAPK信号,由t细胞激活诱导。P21激活激酶。 | 肌动蛋白的组织和迁移,脊柱形态发生 | 没有找到 |
DGAP133 | 6 q13-q14.1 (d) | 见图2;SMAP1缺陷神经突生长;FILIP1发育信号;LCA5失明;SENP6 | MYO6:巨噬细胞内吞作用。无法处理病原体,自噬缺陷;IRAK1BP1管制。自噬。 | 作为血脑屏障的基底膜结构缺陷,缺失包括胶原蛋白基因19A, 12A | Col9A结缔组织,骨强度(图2) |
DGAP139 | 13q14.2 (d)见图2。 | 由于RB1和ITM2B损失导致的淀粉样蛋白沉积相关的智力障碍。PHF11 DNA双链断裂切除,同源重组[48]。 | 含有免疫必需基因:白三烯受体,TRIM13在淋巴细胞白血病中缺失;RB1是免疫系统的潜在守护者;NUDT15,去除氧化损伤; | 内皮细胞中LPAR6细胞-细胞接触位点。适当的血管形成。DLEU2对血管内皮细胞的控制作用。 | dle2:骨密度 |
DGAP142 | MBD5 (T)组蛋白乙酰化被重排打乱的断点表观遗传调控因子。 | 伴有天使综合征和2q21.3微缺失。导致一系列神经发育障碍,包括自闭症和精神分裂症,不足导致行为问题,认知和运动迟缓。 | 婴儿出生后第一年的严重感染。 | 铁代谢铁蛋白水平的控制 | 没有找到 |
DGAP145 | EFTUD2 (T)[剪接体中的RNA剪接调控因子]在断点被重排破坏连接甲基化组蛋白到调控的RNA剪接[50] | 在模型系统中,突变增加剪接所必需的神经祖细胞[51]的凋亡和有丝分裂, | 先天免疫调节器 | 肺静脉引流,心功能正常 | 骨骼发育,与小头畸形相关的突变 |
DGAP147 | NALCN (T)在断点中断 | 神经元中对功能至关重要的电导泄漏。 | 高适应性的孤孔离子通道需要呼吸,渗透调节,支架Src激酶。Src激酶是抵抗感染所必需的 | 没有找到 | 没有找到 |
DGAP154 | Xq25(复制) | XIAP:突触抑制和轴突再生,长期学习。thc2增加神经突延伸。 | XIAP: x-连锁凋亡抑制剂;XIAP过表达抑制细胞凋亡,抑制caspases,有利于病毒感染[52] | SMAD5:缝隙结和紧密结形成;血管特性;造血干细胞发育 | SMAD5:骨成骨 |
DGAP155 | EHMT1 (T)/GLP:编码组蛋白甲基转移酶,一种表观遗传调控因子。 | EHMT1损害原钙粘蛋白的表达,神经元多样性,生长和发育的调节[53]。缺乏导致海马细胞增殖增加[54]。需要记忆,学习。并抑制大脑中的非神经元基因 | 建立IFN基因的表达潜能。对感染的最佳细胞因子反应的需要[55]记忆形成的需要和失调的细胞因子反应预测学习障碍。 | 预防心脏肥厚[56],先天性心脏病 | 骨生成 |
DGAP157 | FOXP1 (T)“PRMT5招募到FOXP1启动子促进H3R2me2s, SET1招募,H3K4me3和基因表达”[57]重排中断。 | 控制空间学习和突触可塑性所需的基因表达 | t细胞调控,与NFKB合作促进b细胞存活 | 诱导胶原合成[59] | 对颅面发育至关重要[60] |
DGAP159 | 10p15.3-p14 (d) GATA3 (d)见图2。GATA3控制增强子的可及性,招募染色质重塑因子对细胞进行重编程。 | 接触脑脊液的神经元GATA3发育 | GATA3是一种免疫调节剂。损失增加,易感染 | 细胞粘附和细胞连接。 | 胚胎关节软骨分化。 |
DGAP161 | 4q34 (d)(见图2) | AGA缺失导致溶酶体储存病伴脑损伤。垂体激素的产生。TENM神经系统发育 | HMGB2编码核酸先天免疫反应中的RNA/DNA传感器HPGD是一种促炎基因;VEGFc淋巴发育和转运;动脉发育和血管重塑。ADAM29细胞粘附和膜结构。 | 红细胞分化、循环、细胞黏附、血管重塑 | 颅面骨骼,骨结构,骨分化,成骨细胞分化 |
DGAP164 | NODAL (T)在小鼠大脑中靶向kdm6b(一种神经元可塑性的表观遗传调节因子)信号。重排也会破坏TET1(甲基化擦除酶) | 节点通过诱导神经保护活性控制神经元存活。调节早期胚胎发育。 | 节点=“激活素a”,编码NK树突细胞功能的中介。作为免疫系统的一部分,脾脏可能无法正常发育, | 血管生成,红细胞的形成 | 破骨细胞形成,软骨形成 |
DGAP166 | SCN1A (T) | 脑形态、记忆[61]可兴奋膜钠离子通透性。疼痛的感觉知觉。 | 突变可能导致病毒感染,导致急性脑病。 | 没有找到 | 没有找到 |
DGAP169 | NR2F1 (T)被重排打乱,诱导全局染色质抑制 | 控制皮层神经元祖细胞的识别。诱导GABA阳性神经元, | 没有找到 | 血管生成、淋巴瘤[62] | 上颌的模式[63] |
DGAP173 | 11 p14.2 (d) | ANO3:颈椎肌张力障碍;BBOX1精神分裂症 | 黏液蛋白15是防止感染的黏液蛋白屏障所必需的, | 没有找到 | 没有找到 |
DGAP186 | NR5A1 (T)被重排打乱,参与多能性重置 | 影响下丘脑回路。甾体组织的性别发育和形成。 | 被流感感染下调被t细胞刺激激活自体免疫 | 血管生成调节因子[64] | 没有找到 |
DGAP189 | SOX5是一种组蛋白去甲基酶 | 指定背侧中间神经元的细胞命运。 | t细胞分化 | Sox5与紧密连接蛋白如ZO-5、occlading和claudin[42]相互作用。可能控制神经干细胞分化为星形胶质细胞。 | 软骨形成、软骨细胞分化的标记基因 |
DGAP190 | SMS (T)驱动核小体之间的相互作用。 | 精胺合成酶基因。多胺如精胺是生长和分化所必需的。精胺控制离子通道活性,并在认知功能中发挥作用[65]。 | 精胺合成破坏淋球菌生物膜的形成。精胺可作为一氧化氮释放载体 | 调节淋巴孔的开放和吸收[66] | 成骨细胞发生,骨表型 |
DGAP193 | SPAST (T) | 突变导致遗传性痉挛性截瘫。对于轴突、纺锤和纤毛中的复杂微管阵列至关重要。基因控制核内体小管裂变、甘露糖-磷酸盐核内体-高尔基体运输和溶酶体结构 | 与炎症相关的氧化应激[在前列腺癌中] | 局部血液流向大脑 | 抑制骨形态发生蛋白信号 |
DGAP199 | NOTCH2 (T)在断点因重排而中断。 | 通路是神经元分化、生存、轴突发育的重要途径 | 树突状细胞的肠道免疫,粘膜免疫,t细胞分泌干扰素,促进t细胞的细胞毒性 | 动脉分化与功能,子宫血管重塑 | 成骨细胞调节骨形成的功能 |
DGAP201 | AUTS2 (T)在断点因重排而中断。与染色质结构相关 | 与大脑发育有关[67],控制多梳抑制复合物1调节肌动蛋白细胞骨架以控制神经元的迁移和投射[68]。 | 多梳复合物的一个组成部分引导t细胞分化,维持EBV靶向的基因。调节NK t细胞和淋巴样祖细胞中的发育基因MSX1[69]。调节Rho GTPases[70],对预防肠道致病菌至关重要[71] | 没有找到 | 没有找到 |
DGAP202 | KDM6A (T)组蛋白二/三去甲基酶在断点重排中断。 | BDNF调节小脑皮层功能突触的成熟 | KDM6a表观遗传促进巨噬细胞中IL-6和IFN-β的产生 | 造血细胞前体[38]的干细胞迁移 | 促进成骨分化 |
DGAP211 | SATB2(T)在断点被重排打乱。表观遗传功能,与染色质重塑因子相互作用。 | 调节神经元兴奋性。帮助指定神经元亚型。新生儿皮层中迁移的胶质样细胞分化为整合神经元的特征[72] | 自噬,衰老,细胞骨架组织。增强pre-B细胞的基因表达 | 没有找到 | 颅面区引导骨再生时上调。 |
DGAP219 | CUL3 (T)泛素连接酶用于调节淋巴样效应程序的染色质模式。在重排的断点处中断。 | 泛素连接酶复合物中的组分与其他复合物协同作用。这一通路的调节控制着大脑的大小和连通性。通路受影响可能与自闭症和精神分裂症有关。 | 调节活性氧的水平,离子在大脑的处理 | 测定内皮细胞、血管生成中整合素的表面水平。介导VEGFR信号。表观遗传调节 | 将拼贴分泌整合到颅面骨形成中[73] |
DGAP232 | Snrpn-snurf (t)/ smn;PWCR;SM-D;sm-N;RT-LI;HCERN3;SNRNP-N;表观遗传印迹所必需的。 | 神经元再生轴突的能力[74] | EBV/HHV-4感染有可能诱导抗sm抗体[75]。HIV-1 Tat与snRNP相关[76]。CMV可能在snRNPs自身抗体SNRPN印迹中心的调节中起作用 | 没有找到 | 促进骨髓胚胎结缔组织干细胞成骨分化。 |
DGAP235 | MBD5 (T)表观遗传调节组蛋白乙酰化在重排断点中断。 | 伴有天使综合征和2q21.3微缺失。导致一系列神经发育障碍,包括自闭症和精神分裂症,不足导致行为问题,认知和运动迟缓。 | 婴儿出生后第一年的严重感染。 | 铁代谢铁蛋白水平的控制 | 没有找到 |
DGAP239 | CHD7 (T)染色质重塑器。 | 调节成人神经发生[77],促进神经干细胞增殖 | 与严重联合免疫缺陷相关的突变 | 没有找到 | 颅面发育所需 |
DGAP244 | CTNND2 (T) | 促进神经元分化[78]小脑发育,肌阵挛性震颤和癫痫,焦虑,认知。 | 在疟疾的脑炎症中显著富集。诱导与感染相关的NFKB炎症反应。[79] | 没有找到 | 脊柱结构 |
DGAP278 | Snrpn-snurf (t)/ smn;PWCR;SM-D;sm-N;RT-LI;HCERN3;SNRNP-N;表观遗传印迹所必需的 | 神经元再生轴突的能力[74] | EBV/HHV-4感染有可能诱导抗sm抗体[75]。HIV-1 Tat与snRNP相关[76]。CMV可能在snRNPs自身抗体SNRPN印迹中心的调节中起作用 | 没有找到 | 促进骨髓胚胎结缔组织干细胞成骨分化。 |
DGAP301 | MEF2C (T)与疾病组蛋白高甲基化相关[80]..因重排而中断 | 调节皮层突触和行为[81] | 螺旋体感染;急性传染性单核细胞增多症患者骨骼疼痛[82];炎症因子IL-33在HIV感染中的表达增加。由炎症激活的抑制粒细胞有利于单核细胞、t细胞受体凋亡[83] | 控制血管平滑肌细胞的增殖和迁移。靶向水通道调节血管生成和内皮细胞血管生成[84]。响应VEGFA。 | 需要启动软骨细胞肥大。与骨密度相关的反义转录本 |
DGAP316 | 18p11.32-p11.22缺失:PHF21A (T) PHF21A编码BHC80, BRAF35组蛋白去乙酰化酶复合体的一个组分。 | 这种组蛋白脱乙酰酶与抑制因子1相互作用,抑制因子1通过一氧化氮自由基控制神经元细胞向神经胶质细胞的转变; | TGIF1免疫稳态,CD4+ t细胞的调节;NDUF2:应激反应的控制 | PHF21a未发现,但包含在删除中 | 没有发现PHF21a,但包含在删除中 |
DGAP317 | 6q14.1 (d) TBX18 (d): IRAK1BP1;IBTK | 图2含有LCA5、ELOV4基因用于视觉,HTR1B基因用于神经传递。神经髓鞘形成 | IRAK1BP1编码白介素1受体相关激酶1结合蛋白IL-1受体相关激酶是先天免疫的关键调节因子。TBX18在炎症和间质纤维化区域过表达;IBTK在巨噬细胞和中性粒细胞中调控NFKB通路诱导的炎症(见图2)。 | 心肌功能 | 没有找到 |
MGH7 | GRIN2B (T)反映癫痫甲基化水平的变化[85] | 发育中的大脑神经元迁移与轴突投射。海马膜电流长期抑制,突触可塑性 | 与母体单纯疱疹病毒2型感染有关。一些大鼠品系可能对产前应激有反应[86] | 没有找到 | 没有找到 |
MGH8 | CHD8 (T)作为染色质绝缘体,它阻断附近增强子的作用。CHD8与绝缘体结合蛋白CTCF相互作用。CTCF-CHD8复合物在活性绝缘子位点上绝缘和表观遗传调控。 | 抑制性神经元表达增强导致可兴奋神经元过量[87]。大脑发育 | 在怀孕期间,母体免疫激活对感染的反应强烈上调。依赖ATP的染色质重塑因子[88]。 | 没有找到 | 没有找到 |
MGH9 | TCF4 (T)受组蛋白脱乙酰酶调控。结合位点重叠组蛋白乙酰化增强子[89] | 调节突触可塑性和记忆。招募组蛋白乙酰转移酶影响染色质重塑[90] | 调节巨噬细胞对HIV-1的敏感性和单核细胞的耐药性;病毒感染下调;压制炎症 | 血管生成 | 成骨,软骨分化 |
NIJ2 | PHIP (T),与组蛋白甲基化相关[91]。MYO6 (T) | NMDA受体转运与突触可塑性。MYO6神经传递,受体内吞作用 | PHIP (pleckstrin同源结构域相互作用蛋白):pleckstrin同源结构域调节巨噬细胞向炎症部位的迁移和分化;MYO6:巨噬细胞内吞作用。自噬。 | 血管生成的潜在作用[92] | 骨代谢 |
NIJ5 | IL1RAPL1 (T) | 突触的形成,认知 | 上调增加先天和适应性免疫反应。细胞凋亡 | 没有找到 | 骨骼的生长 |
NIJ6 | KAT6B (T)/ MORF/ MYST4赖氨酸乙酰转移酶。 | 胼胝体形成, | 控制免疫系统发育中的谱系分化。参与恶性血液病的发病机制[93] | 造血作用 | 骨骼形成,颅骨过早缝合融合 |
NIJ14 | NFIA (T)受染色质结构调控[94] | 大脑形成,胼胝体发育,脊髓和新皮层发育 | 在调节炎症的途径,控制骨髓细胞分化和成熟的脓毒症小鼠。 | 少突胶质细胞和星形胶质细胞之间的平衡。 | 胚胎关节软骨分化 |
NIJ15, NIJ6 | MYT1L (T) | 细胞转化为神经元所需的转录因子之一 | 感染引起的急性氧张力下降[95] | 没有找到 | 没有找到 |
ROC4 | CAMTA1 (T) | 长期记忆形成,渐冻症存活,行为,共济失调 | 控制NFAT信号。整合与微生物组转移相关的应激反应[96] | 控制激活心脏基因程序的钙信号 | 骨分化 |
ROC17 | AUTS2 (T与H3K4me3和表观遗传控制相关 | 调节肌动蛋白骨架以控制神经元的迁移和投射[68]。拷贝数变化的复制热点。 | 多梳复合物的一个组成部分,引导t细胞分化,维持EBV靶向的基因。调节NK t细胞和淋巴样祖细胞中的发育基因MSX1[69]。调节Rho GTPases[70],保护肠道致病菌[71] | 没有找到 | 没有找到 |
ROC23 | TCF12 (T) | 学习和记忆,大脑发育过程中的早期神经元增殖[97] | 中胚层和造血规范的关键调节因子[99] | 控制细胞-细胞连接处的钙粘蛋白 | 成骨细胞分化,纤维颅骨缝合融合 |
ROC43 | SOX5是一种组蛋白去甲基酶 | 指定背侧中间神经元的细胞命运。 | t细胞分化 | Sox5与紧密连接蛋白如ZO-5、occlading和claudin[42]相互作用。可能控制神经干细胞向星形胶质细胞的分化。 | 软骨形成的标记基因 |
ROC62 | SNRPN-SNURF (T)表观遗传印迹所需 | 神经元再生轴突的能力[74] | EBV/HHV-4感染有可能诱导抗sm抗体[75]。HIV-1 Tat与snRNP相关[76]。CMV可能在snRNPs自身抗体SNRPN印迹中心的调节中起作用 | 没有找到 | 促进骨髓胚胎结缔组织干细胞成骨分化。 |
UTR7 | NFIX (T)受甲基化控制 | 海马干细胞分化 | 早期b细胞淋巴细胞和骨髓细胞生成的关键控制。 | 未成熟造血细胞的存活 | 骨骼发育,密度 |
UTR12 | DYRK1A (T),组蛋白磷酸化 | 多巴胺能细胞存活,大脑发育 | DYRK1A调节T细胞[100],控制骨稳态 | 内皮血管生成 | 骨稳态,软骨细胞发育,骨骼形成 |
UTR13 | MBD5 (T)表观遗传调控因子在拓扑相关域中断 | 伴有天使综合征和2q21.3微缺失。导致一系列神经发育障碍,包括自闭症和精神分裂症,不足导致行为问题,认知和运动迟缓。 | 婴儿出生后第一年的严重感染。表观遗传。 | 铁代谢铁蛋白水平的控制 | 没有找到 |
UTR17 | ZBTB20 (T),与控制染色质结构的基因结合,包括MEF2c和SAT2b) | 神经发生的调节 | 淋巴细胞发育与功能,b细胞发育与功能,浆细胞分化,[35] | 星形胶质细胞对损伤的反应,胶质发生 | 肥大软骨细胞的终末分化 |
UTR20 | FOXP2基因(T) | 增加神经元分化,调节哺乳动物皮层神经祖细胞的发育[101] | 母体感染流感病毒后小鼠体内流感病毒水平改变。强有力的证据表明孕产妇感染与精神分裂症有关[102]。调节t细胞功能。 | 控制神经上皮细胞钙粘蛋白的表达[103] | 协调骨骼的形成和发育 |
UTR21 | NSD1 (T)赖氨酸甲基化 | 小脑发育不全。神经元的细胞骨架调节,皮层神经元定向迁移 | 巨噬细胞中的Caspase激活。 | 淋巴循环。 | 骨骼发育 |
UTR22 | 2q24.3 (d) SCN9A (d) | 控制神经元兴奋性所需的几个钠通道基因被删除。组织大脑发育的TTC21B基因;STK39调节脑容量。 | NOSTRIN控制一氧化氮的产生,CERS6与t细胞活性和凋亡相关。 | FIGN影响星形胶质细胞迁移、XIRP2、CERS6心脏健康 | TTC21B颅面发育 |
受影响的家庭成员1 | NCALD1以豆蔻酰化和非豆蔻酰化两种形式存在。组蛋白脱乙酰酶11是一种肉豆蔻酰水解酶[104]。 | 神经元中的钙传感器 | 内吞作用 | 钙信号 | |
受影响的家庭成员1 | NPL - n -乙酰神经氨酸裂解酶通过介导唾液酸可逆转化为n -乙酰甘露胺和丙酮酸来调节唾液酸的细胞浓度 | 可能导致大脑发育所需的唾液酸代谢改变;例:神经元细胞粘附和髓鞘相关糖蛋白[105] | 中风后炎症反应中中性粒细胞和单核细胞表达显著增加的酶[106]。 | 血液中的酶活性 | 唾液酸与骨形成密切相关 |
受影响的家庭成员1 | BCAR3。社会弱势女性成人体重指数增加的候选表观遗传中介因素[107] | Endothelin-1信号。内皮素1是一种有效的血管收缩剂 | 阻止细胞周期对拉应力的响应[108] | ||
受影响的家庭成员2 | ZNF423 -锌指蛋白423与肥胖相关的表观遗传修饰[109],预测年龄的甲基化标记。 | 浦肯野神经元祖细胞的分裂与修复 | b淋巴细胞谱系的发展 | 成骨细胞与脂肪细胞谱系[110],骨关节炎 | |
受影响家庭成员3 | RAP1GDS1 - RAP1 GTP-GDP解离刺激因子1[111]。拮抗一些组蛋白。 | 多极神经元在发育过程中的定向迁移[112], | t细胞稳态,限制TLR炎症反应 | 血管内皮连接稳定性 | 骨骼生长 |
基于Redin和同事[1]的研究,图4图形化地将NCBI数据库中所有病毒和细菌的DNA序列与断裂位点周围的DNA序列联系起来。在大多数情况下,有强有力的证据表明,断裂部位的染色体异常导致神经发育障碍,但在其他地方也可能存在隐性重排[2,3,12]。图中显示了个体疾病中微生物与人类的总同源性得分的巨大差异。患者DGAP154的同源性总分远远超过5万,而其他患者(DGAP142、172和173)的同源性总分远远低于1000。
在受精后的几个小时内,发生了全面的去甲基化,双亲的基因组都重编程为高度开放的染色质[13]。这些表观遗传标记的去除允许L1逆转录转座子表达的突然增加,从而诱导先天免疫反应。许多被研究的染色体异常包含L1-逆转录转座子序列。L1转录活性受DNA甲基化和piwi相互作用RNA控制。表观遗传驱动的缺失会干扰这些表观遗传控制机制的功能(表1)。图5总结了这些数据,显示驱动基因具有表观遗传控制功能,这些功能中的大多数影响染色质3D结构和神经发育所必需的多个系统。
图5:48例神经发育障碍患者中微生物与人类染色体异常同源性的总分。所有与每个患者染色体异常相匹配的组或个体微生物的同源性得分相加,形成图中的每个柱状图。微生物同源性评分根据个体微生物的类型进行颜色编码。1986年E值的平均值为7.3e-13[范围8e-11至2E-168]。发现的一些微生物通常不具有致病性,但如果免疫系统受损,则可能成为条件致病菌。内源性逆转录病毒序列可能干扰单细胞内的重组或修复。在少数情况下,同源性非常大,以至于它们会掩盖所有其他数据,因此这些数据被限制在12,000分。这是对DGAP154 (24,873 HIV/HTLV)进行的检测,如图所示。
致病驱动基因突变大致相当于大量染色体缺失
由于大多数已确定的神经发育障碍驱动基因是表观遗传调节因子或效应因子,因此将它们控制的功能与导致神经发育障碍的染色体缺失中发现的功能进行了比较。几乎所有先天性神经系统疾病的致病驱动基因或染色体缺失都与免疫系统、血管生成、循环和颅面发育的影响密切相关。患有神经发育障碍的受影响家庭成员的缺失也与这一结论一致(表1)。
多重感染由同源性鉴定符合神经发育障碍的体征和症状
在图4所示的48例患者中,多次感染是导致每个人症状和体征的候选因素(表2)。8例患者生长迟缓或“身材矮小”,这可能是由于在妊娠中期或晚期暴露于多次感染所致。48例患者中有20例出现言语缺失、延迟或障碍[1]。多重感染会导致这些问题。例如,HIV-1会导致与语言障碍相关的白质损伤,并损害胎儿生长。在35名患者的染色体异常中,有近50个与HIV-1 DNA匹配。
表2:在神经出生缺陷中发现与染色体异常同源的复发性感染可导致发育缺陷。
与先天性神经疾病DNA重排相匹配的复发性感染 | 中枢神经系统,生理和或致畸作用(如已知)。 | 与此感染有显著同源性的染色体异常患者的数量 |
---|---|---|
hiv - 1, hiv - 2 | 胎儿生长障碍,早产,绒毛膜羊膜炎,蜕膜炎,免疫缺陷。HIV-1会导致与语言障碍相关的白质损伤。HIV-1通过靶向小胶质细胞感染中枢神经系统。 | 在36个病人中有600个匹配 |
HPV16 | 自闭症综合征中与其他病毒感染、细菌感染和化学物质共存的一组感染的一部分[113]。 | 35岁的病人 |
葡萄球菌感染(金黄色葡萄球菌、头球菌、表皮葡萄球菌) | 可能感染脑部,干扰正常神经传导。引起脑膜炎,脑脓肿。主要医院病原体 | 40例患者206例匹配 |
隐形病毒,巨细胞病毒,HHV-4/EBV,单纯疱疹病毒,SV40 | 隐身病毒主要是疱疹病毒,如巨细胞病毒,可以避免被人体免疫反应识别。与神经损伤,听力损失,眼部问题有关。 | 39例患者425例匹配 |
Ralstonia solanacearum | 机会性细菌病原体,与肺炎和新生儿败血症有关,特别是在呼吸机免疫功能低下的患者中。与其他人类病原体有一些相似之处,包括Borrelia, Bordetella, Burkholderia和一种“血液疾病病原体”。 | 44例患者158例匹配 |
htlv 1 | 与神经病变有关。免疫介导的神经系统疾病影响脊髓和周围神经。胎儿神经细胞极易受到感染 | 24例 |
BeAn 58058病毒班德拉巨型病毒 | BeAn 58058与可感染人类细胞的cotia病毒几乎相同(97%)[114]。代表痘病毒的一个不同分支[115] | 36例患者中50例匹配 |
肺炎克雷伯菌,大肠杆菌 | 新生儿肺炎和败血症。 | 35岁的病人 |
人类呼吸道合胞病毒 | 新生儿肺炎,呼吸困难 | 7例:DGAP099、DGAP127、DGAP137、dgap159、DGAP167、DGAP172、DGAP225 |
Waddlia Chondrophila | 最近发现的。导致早产,流产,自然流产。衣原体样微生物。在巨噬细胞中存活,在子宫内膜细胞中繁殖 | 26个不同的病人 |
脑膜炎奈瑟菌,淋病奈瑟菌 | 能破坏人类DNA的细菌。早产,流产,婴儿严重眼部感染。淋病奈瑟菌抗体损害神经突的生长,并与特定的脑蛋白发生交叉反应。 | 患者DGAP159显示出25个与脑膜炎奈米特菌不同的同源性。DGAP017和DGAP101与淋球菌有同源性。 |
假单胞菌putida | 急性细菌性脑膜炎病例中发现革兰氏阴性细菌[116]。在受污染的水和肝素化冲洗溶液中报告[117] | 13例:DGAP012、DGAP93、DGAP100、DGAP125、DGAP133、DGAP134、DGAP154、DGAP159、DGAP167、DGAP169、DGAP170、DGAP220、ROC17 |
Exiguobacterium oxidotolerans | 高过氧化氢酶活性可能使依赖过氧化物的免疫防御失效。 | DGAP127, DGAP225 |
隐形病毒经常与染色体异常匹配,大约有35个匹配序列。隐身病毒大多是疱疹病毒的衍生物,如巨细胞病毒(CMV),出现在免疫抑制患者或具有其他机制,以避免被免疫反应识别。巨细胞病毒不是一种众所周知的致畸原,尽管巨细胞病毒是婴儿的主要威胁。妊娠早期CMV感染可导致严重的大脑异常,并伴有神经症状[14]。巨细胞病毒也是先天性耳聋的常见原因,并可导致视觉异常。48例神经发育患者中有27例有听力损失或耳聋。隐形病毒1是指类人猿巨细胞病毒(株Colburn)非洲绿猴巨细胞病毒,但与之密切相关的病毒,序列同一性高达95%,已从人类患者中分离出来。单纯疱疹病毒是另一种直接感染中枢神经系统的隐形病毒。单纯疱疹可引起癫痫发作(据报道有9例患者)。
HTLV-1是一种逆转录病毒,引起神经系统的免疫介导疾病,影响脊髓和周围神经。神经胎儿细胞比成熟神经元更容易感染HTLV-1。
患者DGAP159与脑膜炎奈奈菌的同源性最强(图2)。脑膜炎奈奈菌引起细菌性脑膜炎,是已知的神经发育缺陷的原因。DGAP159患者的体征和症状与细菌性脑膜炎的残余影响一致,如听力损失、发育迟缓、语言障碍和视力问题。
来自未被归类为致畸物的微生物的DNA也会影响胎儿发育
不仅已知的致畸物,而且在先天性神经疾病的异常人类染色体中发现的几乎所有微生物DNA都可能对胎儿或新生儿产生深远的影响(表2)。图4表明,任何病毒或微生物外源DNA都可能导致发育错误。多个匹配可能代表病毒和细菌DNA片段与人类DNA的同源性。所发现的同源性似乎与微生物是否能插入人类DNA无关。至少在10例患者中发现了HIV、HPV16、HTLV-1、肺炎克雷伯菌、茄酸拉氏菌、金黄色葡萄球菌和隐形病毒。48次重排中有38次与一种或多种病毒序列匹配,44次与细菌序列匹配。在大多数染色体异常中,多重感染与给定的异常DNA序列相匹配。大多数或所有这些感染可能会干扰神经发育(表1-2)。图4包括内源性逆转录病毒序列。这些内源性序列中的大多数代表了无法在细胞之间传播的受损感染,因为它们缺乏离开受感染细胞所需的env基因。然而,HERV序列数量众多,逆转录转座子仍然可以干扰其母细胞内的重组和DNA修复。
家族性染色体异常中缺失的片段指向了感染作为神经发育障碍原因的一般机制
平衡易位的影响仅与神经发育障碍的存在部分隔离。这些差异强调了从三维角度考虑基因组的必要性。此外,还可能存在其他更隐蔽的染色体异常,对家族的全基因组测序可能是必要的。一些家族成员携带平衡的染色体易位,但没有神经发育疾病的体征和症状。在有家族性平衡染色体易位的4个家族中的3个,也发现了患者特异性不平衡缺失,但结果与任何人类参考基因组数据库不重叠。对不平衡缺失进行了感染同源性分析,但也存在倒置、倒置重复、插入和额外的平衡易位。这三个家族的不平衡缺失与感染或其他外源dna强烈同源(图6)。与表1的结果一致,与表观遗传修饰相关的关键基因是被这些短的隐性重排中断的基因之一。
图6:受影响家族中存在的不平衡缺失与微生物是同源的。易位明显平衡的家庭中受智力残疾影响的家庭成员有其他染色体异常,包括不平衡缺失、插入等[3]。缺失显示为与细菌和病毒DNA同源,但插入也发现有类似的同源性。三名感染患者的细菌和病毒同源性的总同源性评分被绘制出来。
反复易位中的微生物同源性
迄今为止,新生易位(11;22)仅在精子发生过程中被检测到,而在其他过程中未被检测到。这些易位归因于回文结构,诱导基因组不稳定[2]。为了确定这些结构是否可能是因为微生物感染干扰了正常的染色质结构,我们对反复断点t(8;22)(q24.13;q11.21)[2]的序列进行了同源性检测。图7显示了断点区域与细菌和病毒序列的强同源性。来自未受影响母亲的序列携带平衡易位重排[2],与受影响病例中的微生物同源性更多样化(图7)。这支持了受影响家庭成员中与感染同源的染色体片段被删除的观点。
图7:母体反复易位病例中的微生物同源性。Mishra及其同事[2]的FHU13-027家族亲本易位t(8;22)与der(8)和der(22)的微生物同源,图中以空格分隔。该序列来自一位正常健康的母亲,她从一位女性先证者遗传了平衡易位t(8;22)。受影响的病例12和病例13(绿条)中存在更多有限的微生物组,这意味着与其他微生物同源的DNA已经丢失。
神经发育中感染干扰的模型
感染DNA发生在经历常染色体显性遗传的神经发育障碍中,因此微生物DNA必须存在于来自父母一方的配子中。图8中提出的机制是基于显示在多个人类染色体上与微生物感染有显著同源性的数据。在人类减数分裂过程中,大量的外源感染DNA伴随着双链断裂和重组最活跃的时期,产生了有缺陷的配子。
图8:DNA从导致神经发育障碍的感染干扰减数分裂的模型。在配子产生之前,经过父母染色体的复制,来自感染的DNA与许多地方的DNA链结合,包括与感染DNA紧密匹配的人类DNA重复序列。此外,逆转录病毒和逆转录转座子可以整合它们的DNA。这些事件干扰还原细胞分裂,染色体之间的拓扑关系,表观遗传调控和高保真断裂修复。由于Mishra和同事报告的回文,来自微生物的干扰可能有利于不合法的组合。在减数分裂期间发生了数百个DNA断裂,已知这些断裂的不正确修复会发生[1],导致染色体异常,如缺失(如图所示)。神经发育中负责连接功能和表观遗传调节的聚集基因丢失或移位。其他具有微生物同源性的染色体段不包含已识别的基因,但可能是必要的控制区或可能涉及染色质结构。仅在人类基因组中就有大约100万个Alu重复序列,在个体神经发育障碍中有许多匹配的感染集。还会出现更多的私有匹配。 When combined with effects from other microorganisms this can cause severe disruption of base pairing in gamete generation.
外来微生物DNA与宿主背景DNA的相似性可能是选择感染和人类清除感染能力的一个主要因素。图8中只显示了一个罕见的缺陷配子,但雄性在青春期开始的减数分裂中产生了四个配子。雌性体内只有一个配子存活,因为产生了三个极体。平衡易位和不平衡易位都可能导致染色体异常,如缺失和插入,因为感染DNA可以插入自身(例如外源性或内源性逆转录病毒)或干扰减数分裂期间的断裂修复。家族中预先存在的平衡染色体易位会破坏正常的染色质结构,产生受影响和未受影响的成员[3]。家族易位增加了在减数分裂期间产生缺陷配子的机会。
检测人工制品是否与人类微生物DNA相匹配
图4[1]中患者数据的基因组重排与E
1986年,在神经发育障碍的断点附近与人类DNA的微生物同源物由126个不同的病毒或细菌序列组成。DGAP159患者中24株不同的脑膜炎奈瑟菌与人类基因组重排的一致性为100%,总分为385 ~ 637,期望值为8e-13。第25株脑膜炎奈瑟菌有98%是相同的。人匹配包括5'UTR样序列、延伸因子α、异戊基焦磷酸转移酶样蛋白、NADH脱氢酶。Clostridium特异性匹配人类ATP酶、ATP合成酶、线粒体G伸长因子和热休克蛋白hsp70 (mRNA)的片段。waddlia chondrophila 1004 bp片段在神经发育断点附近出现32次,与人钙循环蛋白结合蛋白全长同源性89% (E=0.0)。Waddlia软骨细胞也与人caspase募集结构域和人克隆片段有很强的匹配。126条病毒/细菌序列中有55条与Alu序列同源。Alu序列大部分是不活跃的逆转录转座子,但在人类和微生物之间检测到的一些同源性实际上可能是由于Alu或其他重复序列的插入。神经元祖细胞可能支持新生逆转录转位,以响应环境或母体因素[16]。 Both non-Alu and Alu regions account for 90% (113 of 126) of the sequences homologous to microbes and present near breakpoints involved in human neurodevelopmental disorders.
DNA序列伪影测试
为了进一步测试这些微生物序列的某些版本是测序伪产物或被人类基因组污染的可能性,对图中所示的微生物基因组和其他任意选择的微生物基因组进行了与人类基因组的同源性测试。这些反向分析的结果使人与微生物的匹配不太可能是错误或人为的。微生物部分和完整dna与人类dna之间的大量相似之处是普遍存在的,这有助于开发图7中的模型。
同一微生物的多个菌株与所有人类序列之间的同源性进行了测试。在同一微生物的多个菌株中发现了与人类序列的同源性(表3)。在其他情况下,发现了与某些人类基因产物的同源性,但没有足够的数据来比较同一微生物的多个版本。在这些情况下,对人类基因进行了抗所有细菌和病毒的测试。有数百个重要的匹配。肉毒梭菌完整基因组在第4染色体上与人CDKL2酶(86%)有显著同源性。第4号染色体:579,587-75,632,298区域跨度为52712 bp,包含超过50个Alu重复序列,包括AluS、AluY和AluJ的多个版本。而梭状芽胞杆菌本身与Alu重复序列没有同源性。梭状芽孢杆菌在2、3、10、15、1、5号染色体上也有显著的同源性,同源性超过2853 bp (E=0.0),约74%。同样,waddlia chondrophila的全基因组(210万bp)与多个人类基因同源(表3)。
表3:根据结果预测,微生物基因组与人类DNA具有同源区域的独立证据。
微生物 | 人类染色体同源性 | 同源长度(bp) | %同源性,E值 |
---|---|---|---|
淋球菌1090株 | NotI网站 | 233 - 345 | 100%, 5 e - 89 |
淋球菌WHO-L基因组(GenBank: LT591901.1) | Chr 3,15 X和3上有700 bp | 700 | 99 - 100% |
淋球菌1090株 | 克隆的形象 | 519 | 79% |
年代球菌 | 铜转运atp酶 | 1198 | 98%, E = 0.0 |
NC_007795.1金黄色葡萄球菌亚种。葡萄球菌 | 应用合为一体mRNA | 642 | 70%, E = 9 e-58 |
年代capitis | ABC8 | 218 | 71%, 5 e15汽油 |
耐甲氧西林金黄色葡萄球菌 | 琥珀酸辅酶a连接酶Chr13 | 769 | 67% |
Ralstonia solanacearum | s-腺苷同型半胱氨酸水解酶>NM_001242673.1智人腺苷同型半胱氨酸酶样1 (AHCYL1),转录本变异体2,mRNA(转录本变异体2容易产生与其他微生物序列显著匹配的>100) | 791 | 69%。2 e - 73 |
臭假单胞菌IEC33019株染色体,全基因组NCBI参考序列:NZ_CP016634.1 vs菌株T1E (CP003734.1) | 数百个同源性,例如围绕Not1位点克隆HSJ-DM24RS的智人序列 | 674个基点 | 92%, E = 0.0 |
C肉毒 | 9 . HSP70成员 | 1066 | E = 5 e-54 65% |
C肉毒杆菌BrDura | 人类的互补 | 692 | 83%, E = 0.0 |
Waddlia chondrophila (CP001928.1)全基因组210万bp | 磷酸甘油酸酯脱氢酶, 延胡索酸酯酶 伸长因子 Hsp70家族成员9 醛脱氢酶 |
734 1034 992 1548 1168 |
E = 9 E - 71的66% E = 3 E - 63的67% e = 1 e - 112的71% E = 1 E - 68的65% E = 1 e-30 64% |
核糖核苷酸还原酶> 100与cotia病毒(90%同源性),Volepox,猴痘,牛痘和痘苗病毒显著匹配,例如675/939 bp(72%) E=4e-136 | 核糖核苷酸调节亚基(智人核糖核苷酸还原酶调节亚基M2 (RRM2),转录变异体1,mRNA) | 870 | 68%, 8 e - 69 |
牛痘, KY369926.1 描述 牛痘病毒株Kostroma_2015,全基因组分子型 核酸 查询长度 223595 |
至少有100个同源点。与核糖核酸还原酶,z蛋白mRNA,跨膜BAX抑制剂基序,EF手结构域含有EFHC2的同源性 | 68 - 78%的同源性 | 2279 bp,同源性69% (E=0.0) |
HIV-1有28个不同的分离株 | Alu同源bp7300到8000 | 高达98%的识别所有28个序列 | |
HTLV1 J02029 vs HTLV1/HAM长终端重复 | 与羟甾体脱氢酶样1变体同源,hGLI2的mRNA | 97%的同源性 | 2162 bp, 97%同源性(E=0.0) |
图1中发现的逆转录病毒感染已知会将其序列插入人类DNA中,或者有其他感染和传播方式,例如通过抑制关键的保护机制。例如,HIV-1在被特定受体摄取后会破坏辅助性t细胞。像其他逆转录病毒一样,HIV-1的DNA会融入宿主细胞。在神经发育障碍的先天性异常中发现了HIV-1等逆转录病毒的插入。来自印度的HIV-1分离物SC007,其部分基因组(GenBank: KY713228.1)与IgG2 lambda抗体的686个碱基有85%的同源性,与人类DNA中围绕一个罕见的NotI限制位点的412 bp片段有82%的同源性。HIV同源性在人类神经发育障碍序列中非常常见。为了检测这些匹配HIV序列中的人类序列污染物,比较了一个HIV序列概要中28个不同HIV-1分离株的HIV-1基因组的Alu同源区域(bp 7300至9000)。所有28个HIV病毒序列都与人类DNA的同一区域匹配,与人类序列的一致性高达98%。最佳匹配是chr11:74,929,289-74,929,412上的LINCRNA。相比之下,只有一个寨卡病毒序列在3 '端的一小段类人DNA中与人类匹配。 This homology was not found in 20 additional zika virus sequences so zika virus was not considered further.
几乎不可能完全排除测序工件或微生物序列与人类序列污染的可能性。然而,绝大多数微生物同源性并没有反映出许多实验室多年来由于人类DNA污染而造成的广泛的、大规模的错误,而是更有可能表明,选择感染序列是因为它们与人类DNA的区域同源。这可能是Alu DNA进化缓慢背后的驱动力。
讨论
许多感染中的长链DNA与重复出现数十万次的人类DNA序列相匹配。单个微生物也匹配非重复序列。由于这些匹配,可以选择人类感染并最初耐受。感染可以通过干扰配子生成过程中最活跃的重组期而导致突变,而配子生成是男性体内一个持续的过程。已知外源性或内源性逆转录病毒等感染可插入DNA热点[8]。与感染DNA密切匹配的人类DNA序列会产生染色体异常,因为微生物和人类DNA的相似性会对减数分裂造成干扰(图7)。因此,个体的遗传背景可能是决定感染易感性和感染影响的关键因素。在遗传水平上,这表明感染有选择性压力,会发展和使用与人类基因相似的基因,并沉默或突变具有免疫原性的微生物基因。感染基因组在转移到新宿主[17]后迅速进化。在感染中存在与人类基因具有长时间同一性的基因,这使得感染更难被识别为非自我感染。例如,对淋病奈瑟菌不存在免疫状态。 One reason for this is that there are long stretches of N. gonorrhoeae DNA that are almost identical to human DNA. Alu sequences and other repetitive elements are thought to underlie some diseases by interfering with correct homologous recombination as in hereditary colon cancer [18] or abnormal splicing. Why this does not always occur is not well understood. The presence of infection DNA that is homologous to multiple, long stretches of human DNA may mask proper recombination sites and encourage this abnormal behavior.
免疫系统中的神经元和细胞是相互作用的系统,感知并适应共同的环境。这些相互作用可以防止许多疾病的多重病理改变。许多涉及神经发育疾病的基因反映了免疫系统和神经系统之间的强烈关系。总有可能在免疫系统中发现参与神经发育障碍的基因的功能(图1和图4)。预防感染所必需的基因受损会导致包括智力残疾在内的更全面的发育性神经缺陷。这些微生物同源性包括已知的致畸物。对神经发育障碍中缺失的基因簇中的突变进行分析,可以预测脑循环障碍的丧失,从而促进感染。自噬免疫相关功能所必需的细胞基因的损伤可能导致出生后发育过程中神经连接的异常修剪。
聚集性基因损伤可导致免疫、循环和伴随神经系统缺陷的结构缺陷。表1中列出的其他基因丢失和缺失的染色体片段(图1)解释了心功能、听力、骨骼结构、疼痛感知、头骨大小、肌肉张力和许多其他神经发育障碍的非神经体征的缺陷。
基因在同一生物学过程中聚集成簇排列,可以简化神经发育和神经可塑性过程中神经元与其他基因之间的调节和协调。相关功能所需的基因,需要协调调节,已被证明被组织成单独的拓扑相关结构域[20]。神经元与染色质结构和表观遗传景观密切相关。共同调节的辅助基因聚集排列的一个缺点是,在群集中的任何地方,与微生物感染或染色体异常的其他原因的同源性都可能破坏复杂的关键神经过程。影响同一过程所需的多种功能的表观遗传调控因子使其突变尤为关键。在染色体区域的长期发育相互作用加剧了感染的影响。突变或缺失(图1和表1)表明这种效应可发生在神经发育障碍中。在神经发育过程中必须同步的功能被分组在同一个染色体区域,并且可能一起丢失。这与减数分裂期间交叉交叉的组织允许同一基本过程所需的基因集的协调进化和控制的想法是一致的。
微生物DNA序列不太可能是污染物或测序产物。它们都被发现与疾病染色体中的人类DNA相连;不同实验室的多个序列均与同一Alu序列同源。含Alu元素的RNA聚合酶II转录物(AluRNAs)决定核仁结构和rRNA合成,并可能随着细胞周期的进展和细胞适应外部信号[22]而调节核仁组装。HIV-1的整合发生在Alu重复序列附近或内部,无论它们是发生在内含子或外显子[23]中。
图3所示的患者有不同的疾病,不同的染色体异常。这种可变性和异常的罕见性使得这些疾病难以用常规方法进行研究。这里使用的技术可能最终有助于预测个体对特定感染的终身易感性。然而,所使用的方法无法完全识别一种感染,也无法将一种微生物感染与多种感染区分开。
结论
- 一些先天性神经发育障碍的DNA与多种感染的DNA密切匹配,这些感染在人类DNA的长线性延伸上延伸,通常涉及重复的人类DNA序列。受影响的序列显示存在的线性簇的基因紧密间隔在二维。
- 来自感染的干扰可以删除或破坏协调神经发育的人类基因簇和表观遗传调控因子。这种基因组干扰可解释伴随神经系统缺陷的免疫、循环和结构缺陷。
- 神经发育障碍被认为始于父母感染导致插入或干扰减数分裂在重复和独特的人类DNA序列。
- 因此,先天性神经发育障碍被认为是微生物对人类DNA的攻击造成的,是根据与宿主DNA的相似性选择感染微生物的一个例子。
资金
这项研究没有得到外部资助,但BF的激励奖用于支持。
鸣谢
这项工作是基于参考文献中列出的调查人员的出色DNA序列信息,作者非常感谢他们提供这些信息。很高兴感谢UIC生物化学和分子遗传学系以及医学院提供的灵感、挑战和激励。
利益冲突
作者声明没有利益冲突。
没有参考文献