本研究的目的是确定不同补充β-葡聚糖（β-葡聚糖）和益生菌的影响，或者在供饲猪的饲料摄入，营养消化，血液特征和生长性能上组合。在21 d试验中使用了三百六十猪断奶（平均体重，6.4kg）。该治疗组成，由一种对照（无抗生素玉米豆饮食），β-葡聚糖饮食（0.25％β-葡聚糖），T-益生菌饮食（0.2％两种菌株益生菌），一种M-益生菌饮食（0.2％多重菌株益生菌）和共生饮食（0.25％β-葡聚糖和0.2％多利用脂肪酸），以及。与对照相比，所有补充量明显增加了平均每日增益和平均每日进料摄入量（P <0.05）。干物质，粗蛋白质和灰分的表观消化力以及所有治疗组中钙和磷的表观吸收高于对照（P <0.05）。通常，补充共生（β-葡聚糖和益生菌的组合）对营养消化率和生长具有最大的影响。但是共生的影响不是添加的β-葡聚糖和益生菌的作用。这些结果表明，补充益生元和益生菌或共生（β-葡聚糖和多重菌株的组合）对无抗生素的饮食刺激胃肠道中的有益细菌，也可能对断奶的营养消化率和生长性能有益猪。

益生菌，益生元，生长性能，营养消化，血液特征。

本研究的目的是确定不同补充β-葡聚糖（β-葡聚糖）和益生菌的影响，或者在供饲猪的饲料摄入，营养消化，血液特征和生长性能上组合。在21 d试验中使用了三百六十猪断奶（平均体重，6.4kg）。该治疗组成，由一种对照（无抗生素玉米豆饮食），β-葡聚糖饮食（0.25％β-葡聚糖），T-益生菌饮食（0.2％两种菌株益生菌），一种M-益生菌饮食（0.2％多重菌株益生菌）和共生饮食（0.25％β-葡聚糖和0.2％多利用脂肪酸），以及。与对照相比，所有补充量明显增加了平均每日增益和平均每日进料摄入量（P <0.05）。干物质，粗蛋白质和灰分的表观消化力以及所有治疗组中钙和磷的表观吸收高于对照（P <0.05）。通常，补充共生（β-葡聚糖和益生菌的组合）对营养消化率和生长具有最大的影响。但是共生的影响不是添加的β-葡聚糖和益生菌的作用。这些结果表明，补充益生元和益生菌或共生（β-葡聚糖和多重菌株的组合）对无抗生素的饮食刺激胃肠道中的有益细菌，也可能对断奶的营养消化率和生长性能有益猪。

益生菌，益生元，生长性能，营养消化，血液特征。

通常情况下，仔猪的密集农业系统在5至4周的年龄后断奶，并且在断奶后发现仔猪是营养，环境社会和微生物不平衡等压力源[1,2,3]。压力可能导致进料摄入量低，这与体重增加，绒毛萎缩和吸收吸收差有关[4,5]。促进抗生素的生长通常用于预防剂量，以改善动物的性能和健康，并获得经济效益[6]。然而，在2006年起，将在欧盟禁止在猪饮食中促进养殖抗生素的使用。因此，促进抗生素促进抗生素的替代品的新发展在研究中具有很高的优先事项。益生元和益生菌是促进抗生素的潜在替代品，并且已经表明它们可以影响猪中的胃肠生态系统[7]。

β-葡聚糖是葡萄糖的多糖，可以由许多原核和真核生物产生。该组化合物具有若干有益的特性，因此他们在人类和兽医中发现了各种各样的用途，制药，化妆品和化学工业以及食物和饲料生产[8,9]。至于，β-葡LUCANS提高了断奶猪生长性能的提高[10-12]。Bio-MOS®和MTB100®的两种商业制剂由Alltech Inc.的S. Cerevisiae的酵母细胞壁生产。（尼古拉斯维尔，KY）。Due to the content of the active polysaccharides β -D-glucan and α -D-mannan, application of these two products as feed supplement to pigs led to the beneficial results such as enhanced weanling piglet’s protection from bacterial infections and increased weight gain [13-17, 12].

益生菌可能是抗生素的替代品，因为它们可能影响育猪的生长[18,13]。在几项研究中，多株益生菌对宿主动物生长的影响比单株益生菌[19]更大。Rolfe[20]建议使用益生元和益生元的组合(所谓的共生)，因为益生元可能刺激益生元。为此，Nemcová[21]研究发现，与仅添加乳酸菌相比，在断奶仔猪饲粮中添加of和乳酸菌可增加有益菌群，减少有害菌群。Vente- Spreeuwenberg和Beynen[4]的一项综述得出结论，肠道菌群可能受到益生菌或益生元的影响。目前尚不清楚对断奶仔猪的有益影响是否直接影响肠道完整性或消化或吸收。此外，关于有机肥对猪的营养物质消化和矿物质吸收的影响的信息很少。因此，研究添加of和益生菌或添加of和一种多菌益生菌对断奶仔猪粪便菌群、营养物质消化和生产性能的影响是很有意义的。

本试验旨在研究β -葡聚糖为益生元的无抗生素饲粮、两株益生菌、多株益生菌和d)共生(β -葡聚糖与多株益生菌结合)对断奶仔猪生长、营养物质消化率和血液特性的影响。

试验选用平均初始体重(6.17±0.2 kg)、25日龄断奶的“杜×大×长”三元杂交猪360头，进行21d试验。将10窝猪按窝源、性别和体重随机分配到4个猪栏，每栏18头。每只笔分为5个处理，4个重复(每个处理2支带金边笔和2支带手推车笔)。小猪被安置在一个房间里的镀锌铁丝网围栏里，每个围栏3头猪。室温维持在26至28ºc之间，允许猪从双孔自动喂食器和奶嘴饮水器中随意饮用饲料和水。

该治疗由T1：对照（无抗生素玉米糖饮食），T2：2.5％β-葡LUCANs，T3：0.2％多菌株益生菌，T4：0.2％两种菌株益生菌和T5：2.5％β-葡LUCANs的组合和0.2％的多重菌株益生菌。以玉米淀粉为代价加入β-葡LUCans和益生菌。将实验饮食（表1）配制成含有3,340kcal / kg Me，22.0％的Cp，1.50％的赖氨酸，0.42％的蛋氨酸，0.9％的钙和0.8％的磷。饮食以膳食喂食，并配制以满足或超过所有营养素的NRC（1998）建议。加入氧化铬（饮食中0.2％）作为难以解见的标记，以允许消化率测定。

¹缩写:T1:控制;葡聚糖T2: 2%;T3: 0.2%双菌株益生菌;T4: 0.2%多菌益生菌;T5: 0.25% -葡聚糖+ 0.2%多菌益生菌。

^一个提供饮食:每公斤10000 IU的维生素A, 2000国际单位的维生素D3, 42国际单位的维生素E, 5毫克的维生素K,维生素B2的9.6,2.45的维生素B6, 40μg的维生素B12, 27毫克的泛酸,49个毫克的烟酸,生物素0.05毫克,140毫克的铜、145毫克的铁,179毫克的锌、锰12.5毫克,0.5的我,0.25 Se的Co和0.4毫克。

^b用作不易消化的标记物。

^c计算值。

β -葡聚糖的化学成分是一部分废乙醇工厂由糖蜜作为酵母底物加工而来，干物质基础分别为95%和15%的β -葡聚糖作为干物质基础(g/100g)[22]。本研究使用的多株益生菌和两株益生菌均为泰国Micro Innovate Co.， Ltd生产的微生物混合物(表2)。

在第7,14和21天测量体重和饲料消耗，以确定每日增益，平均每日进料摄入和饲料转化率。在实验的第18天，通过直肠按摩从每支笔的三头猪收集粪便样品;将样品合并在笔内，干燥和研磨。饲料和粪便的实验室分析包括干物质（DM），粗蛋白质氮，粗纤维，钙和磷[23]。使用分光光度法（Shimadzu，UV-1201，Japan）测定进料和粪便样品中的铬浓度。测量红细胞（RBC）计数，白细胞（WBC）计数，血细胞比容值，血红蛋白含量，血小板计数，淋巴细胞，中性粒细胞和全血液中的单核细胞浓度。通过颈静脉将血液样品（5mL）收集到从每次治疗中的5只猪中的颈静脉收集到肝脏真空管（Becton Dickinson Vacutainer Systems，Franklin Lakes，NJ），每次治疗的饲料试验中的终止（选用）。使用商用试剂盒（淋巴细胞，单核细胞，中性粒细胞：AVICA®120Perox1,2和3试剂，用自动血液分析仪（Advia 120，Bayer，Tarrytown，USA）分析所有血液样本。（淋巴细胞，中性粒细胞，2和3次试剂，美国; WBC：Advia®120 Baso试剂; RBC和血小板：ADVIA®10Baso试剂;血红蛋白：ADVIA®10HGB试剂）。

以pen为实验单位，采用SAS(1996)一般线性模型程序进行方差分析，采用随机完全区组设计进行参数分析。采用邓肯多重范围试验[24]确定处理之间的显著差异。

提出进料摄入，体重增加和饲料效率的结果（表3）。对于第0至7天，所有四种治疗（补充β-葡聚糖或益生菌或共生）与对照相比，重量增长显着提高（P <0.05）。β-葡聚糖或多菌株益生菌确实改善（P <0.05）饲料效率（增益/饲料）。对于D 7至14，与两个菌株益生菌或对照相比，猪的体重增加的猪喂养共生的共生显着改善（P <0.05）。猪的平均每日饲料摄入喂养共生的猪均高于对照（P <0.05），但与其他治疗不相比。对于D 14至21，饲喂多株益生菌或共生剂的每日增益较高（P <0.05）比对照动物的猪。治疗之间的进料摄入和增益/进料比没有显着差异。在实验期间，补充动物具有类似的增益，但共生有最高的重量增益。

¹三百六十猪，平均初始体重为6.25千克。

²T1:控制;T2: 2.5%β葡聚糖;T3: 0.2%两株益生菌;T4: 0.2%多株益生菌;T5: 2.5% β-葡聚糖和0.2%多株益生菌组合。

^3.汇总标准错误。

^ab意味着不同上标不同的上标不同的行（P <0.05）。

结果对干物质（DM），粗蛋白（CP）和粗灰的表观粪便消化率以及表观粪便吸收的结果（表4）所示用预/ /或益生菌补充饮食（P <0.05）与对照相比，DM，CP，CF和Ca和P的吸收的表观消化率。粪便氨浓度列于表4中。与对照的对照动物相比，所有补充显着降低了粪便氨浓度（P <0.05）。

¹从一百二十只猪收集粪便样品，平均初始体重为6.35千克。

²T1:控制;T2: 2.5%β葡聚糖;T3: 0.2%两株益生菌;T4: 0.2%多株益生菌;T5: 2.5% β-葡聚糖和0.2%多株益生菌组合。

^3.汇总标准错误。

^ab同一行不同上标的平均值不同(p<0.05)

（表5）显示β-葡聚糖和多菌株益生菌补充对血液学性状的影响。在实验期间，与对照相比，所有治疗组的中性粒细胞浓度在数值上更高。RBC计数，WBC计数，血细胞比容，血红蛋白，淋巴细胞，中性粒细胞和单核细胞浓度无显着差异。

¹血液样品从八只猪的每次治疗中取出。

²T1:控制;T2: 2.5%β葡聚糖;T3: 0.2%两株益生菌;T4: 0.2%多株益生菌;T5: 2.5% β-葡聚糖和0.2%多株益生菌组合。

^3.汇总标准错误。

^ab同一行不同上标的平均值不同(p<0.05)

我们假设β -葡聚糖、益生菌和共生菌可以通过刺激有益菌群或在肠道中添加有益菌群来提高有益的生长性能、营养物质消化率和血液特性。这可能会改善肠道健康，并在这方面间接导致采食量的增加。因此，动物可能会因为吃得更多而提高生长性能。我们还研究了β -葡聚糖和多菌益生菌的组合是否比其他无抗生素饲粮处理对断奶仔猪的增重和采食量有更高的影响。Shim[1]报道了单独或联合添加寡糖和益生菌对断奶仔猪采食量、营养物质消化率和生长性能的影响。试验结果表明，与对照组相比，所有添加物均提高了平均日增重和平均日采食量(p<0.05)。一些研究者(Gibson和Roberfroid, 1995;Kumprecht和Zobac, 1998年;Nemcová et al.， 1999)的研究表明，与益生元或益生菌单独使用相比，共生可能更有利于生长性能和健康。在本实验中，共生菌与益生菌和益生菌相似。 The supplementation of symbiotic (combining prebiotic and probiotic) significantly increased growth performance compared to the control (p<0.05) and the increase of growth performance for the symbiotic group can be recommended by numerically increased average daily feed intake.

益生菌的补充没有显着影响生长。这一结果与其他研究类似（Olsen和Maribo，1999; [25]。但文献中的其他研究报告说，β-葡聚糖对生长性能明显刺激作用[12,13-17]。差异可能与之相关不同研究中使用的葡萄糖的不同化学结构（聚合度），或葡萄糖长度和其他可发酵源的存在，特别是在文献中使用的饮食中的非淀粉多糖。

我们还研究了与两种菌株益生菌相比喂养一些多应变益生菌来喂养一些多重菌株饲料，导致大量效果。与两种菌株益生菌相比，补充多菌株益生菌倾向于导致较高的生长性能。已经假设多重菌株益生菌也可能在不同的位点处活跃。在该实验中，与两个菌株益生菌相比，多应力益生菌含有微生物物种，但也导致饮食量较多。在非最佳条件下益生菌可以改善生长和健康[19]。该实验在最佳条件下进行，但是动物已经运输。所以他们经历了一些压力。断奶猪已被运输（约30分钟。通过卡车，覆盖卡车）从被断奶当天到实验室的商业农场，在实验前不允许适应期。一些研究表明，喂养益生菌的喂养血液中的性能（生长和饲料转化）改善了[1,26-28]。然而，其他研究没有发现益生菌在断奶仔猪中的影响[29,30]。

总体而言，与其他处理相比，共生猪的DM和Cp的表观粪便消化率（P <0.05）。不知道回肠中蛋白质消化率是否不同。由于有更多的粪便生物质，CP的粪便消化率将较少。这被认为是有益的。可能是小肠绒毛中的绒毛和较薄的上皮可能导致通过刺激有益细菌来改善胃肠道中的营养物质的消化和吸收。然而，其他研究并未对断奶仔猪的益生元有影响[25,31]。

研究表明，非结构多糖(NSP)可以增加人体[32]中钙、镁、锌和铁的可用性。在本试验中，与对照组相比，单独添加益生元和益生菌或两者联合添加均可提高钙的表观吸收(P<0.05)。与其他处理组相比，共生组显著提高了磷的消化率(P<0.05)。这些结果与断奶仔猪饲喂果寡糖可提高大鼠钙磷吸收的结果相一致。其他报道[32,34]也表明，菊粉和果寡糖等益生元可能通过产生VFA增加矿物质的溶解和增加发酵导致的pH降低来增加矿物质的生物利用度[35,36]。因此，添加共生菌可能会更多地刺激肠道中的发酵，这可能在一定程度上有助于提高矿物质的消化率。Houdijk[25]发现低聚果糖或TOS和Shim[1]对钙、磷的回肠消化率相似，单独或联合喂食低聚果糖(of)和益生菌对断奶仔猪营养物质消化率的影响可以提高断奶仔猪对钙、磷的消化率。

在本试验中，β -葡聚糖、益生菌和共生菌的添加均不影响血液特性。全血淋巴细胞、中性粒细胞、单核细胞、白细胞计数、红细胞计数、红细胞压积、血红蛋白浓度无显著差异。然而，Shim[1]发现，只有在添加共生体时，血小板计数等血液学性状显著高于FOS (P<0.05)。Herich[37]发现，与乳酸菌和对照组相比，在断奶仔猪中添加共生菌(结合乳酸菌和FOS)有增加淋巴细胞、白细胞、中性粒细胞、CD4 + T细胞等免疫参数的趋势。Pierre[38]证明低聚果糖可增强小鼠t淋巴细胞功能。有研究表明，FOS或菊粉等益生元可能对断奶仔猪的免疫系统和健康有益。

在无抗生素饮食中添加的每一种共生(β -葡聚糖和多菌益生菌的结合)益生元和益生菌都能促进生长，磷和钙吸收增加，营养物质消化率略有提高，与对照组或其他补充益生元或益生菌相比。

作者感谢泰国Rich and Green Co.， Ltd、Nongbua Farm & Country Home Village Co.， Ltd和泰国Ratchaburi省的工作人员提供的资金，以便在整个过程中提供建议、指导和支持。感谢泰国外交部“伊耶瓦底-湄南河-湄公河经济合作战略”项目中的泰国国际发展合作署(TICA)。